Государственный акционерный концерн «узфармсаноат»

Главная страница
Контакты

    Главная страница


Государственный акционерный концерн «узфармсаноат»



страница5/27
Дата06.01.2017
Размер5,69 Mb.


1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   27

Для постановки ПЦР использовали наборы реагентов производства «Евроген» (Москва, Россия). Конечный объем реакционной смеси составлял 25 мкл с учетом добавленной матричной ДНК. Компоненты реакции вносили согласно инструкции производителя. Амплификацию проводили согласно протоколам [2, 3, 4, 6, 18]. Полученные ПЦР-продукты визуализировали методом электрофореза (в 0,5Х ТВЕ буфере) в 2% агарозном геле, содержащем бромистый этидий (при напряженности электрического поля 6 В/см в течение 30 мин), с последующим просмотром в УФ-трансиллюминаторе.



Результаты и их обсуждение.

Включенные в исследование штаммы Salmonellа, выделенные от больных острыми кишечными инфекциями в областной инфекционной больнице в 2012 – 2013 гг., по морфолого-культуральным, биохимическим и антигенным свойствам соответствовали S. Тyphimurium. Результаты изучения чувствительности выделенных штаммов к вышеуказанному набору АМП и определение МИК50 и МИК90. представлены в таблице 2. Все изученные штаммы были устойчивы к 1 и более классам АМП. Согласно данным, представленным в таблице 2, в исследованной популяции Salmonella отмечена устойчивость практически ко всем изученным АМП. Причем, доля штаммов, устойчивых к критически важным для медицины классам АМП (бета-лактамам и фторхинолонам) чрезвычайно высока. Так, исследуемые штаммы в 100% устойчивы к различным β-лактамным антибиотикам (как незащищенным, так и защищенным клавулановой кислотой), причем штаммы характеризовались чрезвычайно высоким уровнем устойчивости - МИК50 и МИК90 ампициллина и цефотаксима составили 512 мкг/мл, цефтазидима 128 мкг/мл. В группе β-лактамных антибиотиков сохранили свою активность в отношении Syphimurium только карбапенемы (имипенем, меропенем).


Таблица 2.

Чувствительность к АМП штаммов S. Тyphimurium (n=32),

выделенных от больных ОКИ в Хорезмской области в 2012 – 2013 гг.

АМП

Штаммы (n=32)

абс (%)

МИК50

мкг/мл

МИК90

мкг/мл

R

I

S

β-лактамы

Ампициллин

32 (100%)

0

0

512

512

амоксициллин/клавуланат

32 (100%)

0

0

но

но

Цефотаксим

32 (100%)

0

0

512

512

цефотаксим/клавуланат

32(100%)

0

0

но

но

Цефтазидим

32 (100%)

0

0

256

256

цефтазидим/клавуланат

32(100%)

0

0

но

но

Цефепим

32(100%)

0

0

но

но

Имипенем

0

0

32(100%)

но

но

Меропенем

0

0

32(100%)

но

но

Хинолоны

налидиксовая кислота

32 (100%)

-

0

512

512

Ципрофлоксацин

0

17(53,1%)

15(46,9%)

1

1

Аминогликозиды

Гентамицин

26 (81,3%)

0

6 (18,7%)

128

128

Препараты других групп

Тетрациклин

32(100%)

0

0

128

128

Хлорамфеникол

32 (100%)

0

0

512

512

ко-тримоксазол (триметоприм/сульфаметоксазол)

28 (87,5%)

0

4 (12,5%)

512

512

Примечание: S- чувствительно, I-умеренно-устойчиво, R – устойчиво, но – не определяли

Фторхинолоны, как правило, являются препаратами выбора при антибактериальной терапии осложненной сальмонеллезной инфекции. Ранее эти препараты показывали высокую клиническую эффективность при лечении инфекций, вызванных полирезистентными штаммами Salmonella, включая S.Typhi [17]. В настоящее время применение фторхинолонов для лечения сальмонеллезной инфекции ограничено широким распространением штаммов, нечувствительных (устойчивых или умеренно-устойчивых) к этой группе препаратов. Так, 100% исследуемых штаммов S. Тyphimurium были устойчивы к налидиксовой кислоте, при этом МИК50 и МИК90 составили 512 мкг/мл. Умеренно-устойчивых к фторхинолонам (ципрофлоксацину) штаммы составили 53,1%, чувствительность сохранили 46,9%. Следует отметить, что диско-диффузионный метод не позволяет достоверно определять чувствительность штаммов Salmonella к ципрофлоксацину. При определении чувствительности к этому препарату необходимо использовать методы определения МИК. Согласно современным международным рекомендациям лечение сальмонеллезной инфекции фторхинолонами с высокой вероятностью будет неэффективно, в том случае если МИК ципрофлоксацина для штамма-возбудителя превышает 0,06 мг/л. Наше исследование выявило, что МИК50 и МИК90 ципрофлоксацина составило 1 мкг/мл, что указывает на высокую вероятность клинической неэффективности использования фторхинолонов для лечения сальмонеллезной инфекции у пациентов Хорезмской области.

В течение нескольких десятилетий хлорамфеникол являлся препаратом выбора при лечении сальмонеллезов. После появления более безопасных и эффективных АМП это препарат стал рассматриваться как альтернативный или препарат второго ряда. Наше исследование показало, что среди изученных штаммов Syphimurium 100% резистентных к хлорамфениколу, причем МИК50 и МИК90 составили 512 мкг/мл. Также с высокой частотой отмечена устойчивость к антибиотикам тетрациклинового ряда (устойчивы 100%, МИК50 и МИК90 - 128 мкг/мл), гентамицину (81,3%, МИК50 и МИК90=128 мкг/мл), ко-тримоксазолу (87,5% штаммов, МИК90=512 мкг/мл).

Исследование показало, что большая часть изученных штаммов характеризовалась сочетанной устойчивостью к нескольким АМП. Выявленные фенотипы сочетанной резистентности представлены в таблице 3.


Таблица 3.

Фенотипы резистентности штаммов S. Тyphimurium (n=32),

выделенных от больных ОКИ в Хорезмской области в 2012 – 2013 гг.

Фенотипы резистентности

Количество штаммов

абс

%

Всего чувствительных

0

0

Всего устойчивых к 2 и более классам АМП, из них:

- к 8 АМП: A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/NA

2

6,25

- к 9 АМП: всего

6

25,0

из них A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/CO/NA

4

12,5

A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/NA

2

6,25

- к 10 АМП: A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA

24

75,0

Всего

32

100

Примечание: ампициллин (А), ампициллин/клавулановая кислота (AC), тетрациклин (T), хлорамфеникол (C), гентамицин (GM), триметоприм-сульфаметоксазол (CO), цефотаксим (CTX), цефтазидим (CA), налидиксовая кислота (NA), ципрофлоксацин (CIP), цефетим (CPM)
Среди тестированных штаммов сальмонелл преобладали фенотипы с множественной резистентностью к АМП: все штаммы характеризовались устойчивостью к 8 и более АМП, причем эти штаммы сочетали устойчивость к β-лактамам, обусловленную продукцией бета-лактамаз расширенного спектра (БЛРС), с устойчивостью к препаратам других групп. Наиболее часто встречался фенотип резистентности к ампициллину, амоксициллину/клавулановой кислоте, цефотаксиму, цефтазидиму, цефепиму, тетрациклину, хлорамфениколу, гентамицину, ко-тримоксазолу, налидиксовой кислоте (A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA), такие штаммы составили 75,0%.

У штаммов S.Typhimurium, устойчивых к β-лактамам, была проведена детекция генов, ответственных за продукцию β-лактамаз широкого и расширенного спектра различных генетических семейств. Результаты исследования представлены в таблице 4.


Таблица 4.

Частоты выявления генов, кодирующих продукцию β-лактамаз,

у штаммов S. Тyphimurium (n=32), выделенных от больных ОКИ

в Хорезмской области в 2012 – 2013 гг.

Гены

Результат детекции

отрицательный

положительный

абс

%

абс

%

blaCTX-M

0

0

32

100

blaCTX-M -1

3

9,4

29

90,6

blaCTX-M -2

3

9,4

29

90,6

blaCTX-M-25

7

21,9

25

78,1

blaSHV

16

50,0

16

50,0

blaTEM

9

28,1

23

71,9

blaVIM

32

100

-

0

blaOXA-48

32

100

-

0

blaКРС

32

100

-

0

blaNDM-1

32

100

-

0

blaIMP-1

32

100

-

0

Проведенные исследования не выявили генов, кодирующих продукцию β-лактамаз карбапенемаз генетических семейств OXA-48, КРС, VIM, NDM, IMP. У всех исследованных штаммов Syphimurium выявлены гены β-лактамаз генетического семейства СТХ-М (100,0%), относящиеся к генетическим группам CTX-M 1 (90,6%), CTX-M 25 (78,1%) и CTX-M 2 (90,6%). Так же у исследуемых штаммов обнаружены гены SHV (50,0%) и TEM (71,9%). Изученные штаммы характеризовались сочетанием генов β-лактамаз SHV, ТЕМ и СТХ-М различных генетических групп (таблица 5).



Таблица 5.

Генотипы резистентности штаммов Syphimurium (n=32),

выделенных от больных ОКИ в Хорезмской области в 2012 – 2013 гг.



Гены β-лактамаз

Количество штаммов

абс

%

1

Отсутствуют

0

0

2

blaCTX-M1

1

3,1

3

blaCTX-M2

1

3,1

4

blaCTX-M1, - CTX-M2

3

9,3

5

blaCTX-M1, - CTX-M2, -СТХ-М25

2

6,2

6

blaCTX-M1, - CTX-M2, -СТХ-М25,-TEM

10

31,3

7

blaCTX-M1, - CTX-M2, -СТХ-М25,-SHV

2

6,2

8

blaCTX-M1, - CTX-M2,-TEM,-SHV

2

6,2

9

blaCTX-M1, - CTX-M25,-TEM,-SHV

2

6,2

10

blaCTX-M2, - CTX-M25,-TEM,-SHV

2

6,2

11

blaCTX-M1, - CTX-M2, -СТХ-М25,-TEM,-SHV

7

22,2




Всего

32



У 30 из 32 исследованных штаммов (93,8%) одновременно выявлены гены нескольких β-лактамаз. Так, более 50% штаммов характеризовались преимущественно генотипом резистентности, включающим гены четырех β-лактамаз различных сочетаний – 18 штаммов (56,3%): наибольше встречались CTX-M1, CTX-M2 и CTX-M25, ТЕM 31,3%. Семь штаммов (22,2%) обладали одновременно генами пяти β-лактамаз, два штамма – генами трех β-лактамаз (6,2%), три штамма – генами двух β-лактамаз (9,3%), У двух штаммов выявлен ген одной β-лактамазы семейство СТХ-М.

Таким образом, учитывая широкое распространение в популяции ведущего возбудителя сальмонеллезов S.Typhimurium штаммов, устойчивых к антимикробным препаратам, включая цефалоспорины и фторхинолоны, возможности выбора эффективных антибиотиков для лечения сальмонеллезной инфекции существенно сузились.

Следует отметить, что при определении чувствительности к фтохинолонам необходимо использовать методы определения МИК ципрофлоксацина, поскольку диско-диффузионный метод недостаточно достоверен.



Выводы:

  1. Таким образом, популяция штаммов Syphimurium, выделенных от больных ОКИ в Хорезмской области в 2012-2013 гг., характеризуется чрезвычайно высокой долей штаммов, устойчивых к АМП, в том числе критически важным для медицины – β-лактамам (100,0%) и фторхинолонам (налидиксовой кислоте 100,0%).

  2. Штаммы Syphimurium характеризуются множественной резистентностью к различным классам АМП. Четверть штаммов (75,0%) имеют одинаковый фенотип резистентности A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA, что может свидетельствовать о клональном распространении возбудителя.

  3. Устойчивость штаммов Syphimurium к β-лактамам (включая цефалоспорины 3-4 поколения) обусловлена продукцией β-лактамаз генетических семейств ТЕМ и СТХ-М, причем 93,8% штаммов характеризуются одинаковым генотипом резистентности и обладают генами четырех β-лактамаз: ТЕM, CTX-M1, CTX-M2 и CTX-M25, что также может свидетельствовать о клональном распространении возбудителя.


Литература:

  1. Борьба с устойчивостью к антибиотикам с позиций безопасности пищевых продуктов в Европе. ВОЗ. 2011.

  2. Мудрак Д.Е. Молекулярно-генетические особенности устойчивости к бета-лактамным антибиотикам грамотрицательных микроорганизмов – возбудителей нозокомиальных инфекций. Автореферат диссертационной работы. 2010, стр. 142

  3. Шевченко О.В., Эйдельштеин М.В., Степанова М.Н. Металло-β-лактомазы: значение и методы выявления у грамотрицательных неферментирующих бактерий. Клиническая микробиология антимикробная химиотерапия, 2007, Том 9, №3,стр. 211-218

  4. Anne Marie Queenan and Karen Bush. Carbapenemases: the versatile β-lactamases. Clinical Microbiology Reviews, 2007, Vol.20, No.3, p.440-458.

  5. European Food Safety Authority. The Community summary report on antimicrobial resistance in zoonotic agents from animals and food in the European Union in 2004–2007. EFSA Journal, 2010, 8(4):1309–1615 (http://www.efsa.europa.eu/en/efsajournal/doc/1309.pdf, accessed 7 February 2011).

  6. G. Zarfel et al. Emergence of New Delhi metallo-β-lactamase, Austria. Emerg. Inf. Dis., 2011, Vol.17, No.1, p.129.

  7. Hammerum AM et al. Danish integrated antimicrobial resistance monitoring and research program. Emerging Infectious Diseases, 2007, 13(11):1632–1639.

  8. Impacts of antimicrobial growth promoter termination in Denmark. The WHO international review panels evaluation of the termination of the use of antimicrobial growth promoters in Denmark. Geneva, World Health Organization, 2003 (http://www.who.int/gfn/en/Expertsreportgrowthpromoterdenmark.pdf, accessed 20 January 2011).

  9. ISO-6579 : 2002 (E) 4th Ed. Microbiology- General Guidance on Methods for the detection of Salmonella, International Organisation for Standardization, Geneve, Switzerland.

  10. Jean S.S., Lee Y.T., Guo S.M., Hsueh P.R. Recurrent infections caused by cefotaxime- and ciprofloxacin-resis- tant Salmonella enterica serotype Choleraesuis treated successfully with imipenem. J Infect 2005; 51:163-5.

  11. Jean S.-S., Wang J.-Y., Hsueh P.-R. Bacteremia caused by Salmonella enterica serotype Choleraesuis in Taiwan. J Microbiol Immunol Infect 2006; 39:358-65.

  12. Joint FAO/OIE/WHO Expert Workshop on Non-Human Antimicrobial Usage and Antimicrobial Resistance: scientific assessment: Geneva, 1–5 December 2003. Geneva, World Health Organization, 2004 (http://www.who.int/ foodsafety/publications/micro/en/amr.pdf, accessed 20 January 2011).

  13. Ko W.C., Yan J.J., Yu W.L., et al. A new therapeutic challenge for old pathogens: community-acquired inva- sive infections caused by ceftriaxone- and ciprofloxacin- resistant Salmonella enterica serotype Choleraesuis. Clin Infect Dis 2005; 40:315-8.

  14. M02-A11: Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests; Approved Standard – Eleventh Edition.

  15. M07-A10: Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard - Tenth Edition.

  16. M100-S22: Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, 22th Edition

  17. Pegues D.A., Ohl M.E., Miller S.I. Salmonella species, including Salmonella typhi. In: Mandell GL, Bennett JE, Dolin R: Mandell, Douglas, and Bennett’s Principles and practice of infectious diseases. Ed. 6. Philadelphia: Elsevier Churchill Livingstone, 2005.P.2636-5

  18. S.Egorova et al. Prevalence and characterization of extended – spectrum cephalosporin-resistant nontyphoidal Salmonella isolates in adults in Saint Petersburg, Russia (2002-2005). Micr.Drug Resis., 2007, Vol.13, No. 2, p.102-107.

  19. Threlfall E.J. Multiresistant Salmonella typhimuri- um DT104: a truly international clone. J Antimicrob Chemother 2000; 46:7-10.

  20. Threlfall E.J., Fisher I.S.T., Berghold C., Edwards G., et al. Antimicrobial drug resistance in isolates of Salmonella enterica from cases of salmonellosis in humans in Europe in 2000: results of international multi-centre surveillance. Euro Surveill. 2003;8(2):41-5.



РЕЗЮМЕ

РЕЗИСТЕНТНОСТЬ К АНТИМИКРОБНЫМ ПРЕПАРАТАМ У ШТАММОВ SALMONELLA ТYPHIMURIUM ВЫДЕЛЕННЫХ ОТ БОЛЬНЫХ ОСТРЫМИ КИШЕЧНЫМИ ИНФЕКЦИЯМИ В ХОРЕЗМСКОЙ ОБЛАСТИ

Абдухалилова Г.К.1, Тухтамуродов Х.Д.2, Ибрагимов А.А.1,

Ахмедов И.Ф.1, Гулямов Н.Г1.

Научно-исследовательский институт эпидемиологии,

микробиологии и инфекционных заболеваний,

Ташкентская Медицинская Академия
На 32 штаммах Salmonella Тyphimurium, выделенных в 2012-2013 гг. от больных изучены, бактериологическими и молекулярно-генетическими методами, чувствительность штаммов к антимикробным препаратам. Выявлена чрезвычайно высокая доля штаммов, устойчивых к АМП, в том числе критически важным для медицины – β-лактамам (100,0%) и фторхинолонам (налидиксовой кислоте 100,0%). Штаммы Syphimurium характеризуются множественной резистентностью к различным классам АМП. Четверть штаммов (75,0%) имеют одинаковый фенотип резистентности A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA, что может свидетельствовать о клональном распространении возбудителя. Устойчивость штаммов Syphimurium к β-лактамам (включая цефалоспорины 3-4 поколения) обусловлена продукцией β-лактамаз генетических семейств ТЕМ и СТХ-М, причем 93,8% штаммов характеризуются одинаковым генотипом резистентности и обладают генами четырех β-лактамаз: ТЕM, CTX-M1, CTX-M2 и CTX-M25, что также может свидетельствовать о клональном распространении возбудителя.

Ключевые слова: антимикробные препараты, резистентность, ген, фенотип, генотип, Syphimurium

SUMMARY

RESISTANCE TO ANTIBIOTICS OF SALMONELLA TYPHIMURIUM ISOLATES FROM PATIENTS WITH ACUTE ENTERIC INFECTIONS

IN KHOREZM REGION.

Abdukhalilova G.K.1, Tuhtamurod H.D.2, Ibragimov AA1,

Akhmedov I.F.1, Guliamov N.G1.

Research Institute of Epidemiology, Microbiology

and Infectious Diseases, Tashkent Medical Academy.
We studied 32 strains of Salmonella Typhimurium isolated from patients in period 2012-2013 and studied by bacteriological, molecular-genetic methods and strains sensitivity to antimicrobial agents. It revealed an extremely high proportion of strains resistant to the antibiotics, including - β-lactams (100.0%) and fluoroquinolones (100.0%). Strains of S.Typhimurium characterized by multiple resistances to different classes of the antibiotics. About 75.0% of the strains have the same resistance phenotype A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA, which may indicate the clonal propagation of the pathogen. Resistant strains of S.Typhimurium to β-lactams (including cephalosporins of 3-4 generations) is due to produce β-lactamase genetic families TEM and CTX-M, with 93.8% of the strains are characterized by the same genotype and resistance genes have four β-lactamases: TEM, CTX-M1, CTX-M2 and CTX-M25, it can also indicate the clonal propagation of the pathogen.

Key words: antibiotic, resistance, gen, phenotype, genotype, S.Тyphimurium.
ХУЛОСА

ХОРАЗМ ВИЛОЯТИДА ЎТКИР ИЧАК ИНФЕКЦИЯЛАРИ БИЛАН ОҒРИГАН БЕМОРЛАРДАН АЖРАТИБ ОЛИНГАН SALMONELLA ТYPHIMURIUM НИНГ МИКРОБЛАРГА ҚАРШИ ПРЕПАРАТЛАРГА ЧИДАМЛИЛИГИ.

Абдухалилова Г.К.1, Тухтамуродов Х.Д.2, Ибрагимов А.А.1,

Ахмедов И.Ф.1, Гулямов Н.Г1.

Эпидемиология, микробиология ва юқумли касалликлари

илмий текшириш институти, Тошкент Тиббиёт Академияси.

2012-2013 йилларда беморлардан ажратиб олинган Salmonella Тyphimurium нинг 32 та штаммлари, бактериологик ва молекуляр-генетик усуллар билан микробларга қарши препаратларга сезгирлиги ўрганилди.

Штаммларнинг аксарияти микробларга қарши препаратларга жумладан, тиббиёт учун ўта муҳим бўлган – β-лактамларга (100,0%) ва фторхинолонларга (100,0%) ҳам чидамли эканлиги аниқланди. S.Тyphimurium нинг штаммлари микробларга қарши препаратларнинг ҳар хил синфларига кўп сонли чидамлилиги билан ажралиб туради. 75,0% га яқин штаммлар бир хил A/AC/CTX/CA/CPM/T/C/GM/CO/NA чидамлилик фенотипига эга, ушбу ҳолат қўзғатувчиларнинг битта клондан тарқалганлигидан далолат бериши мумкин.

S.Тyphimurium штаммларининг β-лактамларга чидамлилиги (цефалоспоринларнинг 3-4 авлодлари билан бирга), ТЕМ ва СТХ-М генетик оиласининг β-лактамазаларнинг ишлаб чиқариши билан боғлиқ, шунингдек 93,8% штаммлар ҳам бир хил чидамлилик генотипи билан ифодаланади ва β-лактамазанинг 4та ТЕM, CTX-M1, CTX-M2 ва CTX-M25 генларига эга эканлиги ҳам қўзғатувчиларнинг битта клондан тарқалганлигидан далолат бериши мумкин.

Калит сўзлари: микробларга қарши препаратлар, сезгирлиг, ген, фенотип, генотип, S.Тyphimurium




УДК:616.94:616.25-003:616.9-08-085

ПЕРИОПЕРАЦИОННАЯ АНТИБИОТИКОПРОФИЛАКТИКА

ХИРУРГИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ ПРИ ОСТРОМ АППЕНДИЦИТЕ
Аваков В.Е.,1 Урунов З.Б., 1 Лутфиллаев О.К.,2 Норбаева С.A., 2

Ибрагимов С.С., 2 Валиханов А.А., 2 Абдужапаров Ҳ.Н.2 , Хаитов Ш.Ш. 2

1Ташкентская медицинская академия, Кафедра анестезиологии и реаниматологии

2Вторая клиника Ташкентской медицинской академии, Отделение хирургической реанимации №1
Ключевые слова: госпитальные инфекции, гнойно-септические осложнения, периоперационная антибиотикопрофилактика, лейкоцитоз, инфекции области хирургического вмешательства (ИОХВ)

Актуальность. Несмотря на значительные успехи анестезиологии, хирургии, современной фармакологии и создание новых антибиотиков широкого спектра действия, к началу XXI века проблема нозокомиальных инфекций приобретает все большую медицинскую значимость. Одновременно с увеличением частоты хирургической патологии воспалительного характера, возросли число и объем сложных оперативных вмешательств с инвазивными диагностическими процедурами, что также привело к росту частоты послеоперационных гнойно-септических осложнений [1].

В неотложной абдоминальной хирургии частота гнойных осложнений достигает 23,5-71,2%. Возникновение инфекций в области хирургического вмешательства (ИОХВ) увеличивает срок госпитализации пациента, в среднем на 6,5 суток, появляется потребность использования дополнительных антимикробных препаратов, что, в свою оче­редь, повышает риск развития резистентности к ним возбудителей инфекции и селекции госпитальных полирезистентных штаммов. Оценочная стоимость лечения ИОХВ у одного пациента может достигать 40 000 долларов США [2,3,8]. Профилактика важна и основана на особенностях предоперационной подготовки, хирургической техники и послеоперационного ухода за раной. Массивное, длительное и далеко не всегда целенаправленное использование антибиотиков сыграло отрицательную роль. Частота выявления резистентных и умеренно резистентных штаммов микроорганизмов к одному и более антибактериальным препаратам достигает 57%, а устойчивость к 5-6 антибиотикам появляется у 32% больных [4,7].

Установлено, что на фоне лечения антибактериальными средствами кишечная флора пациента не восстанавливается и через 2 недели. Под воздействием антибиотиков происходит селекционная устойчивость клонов, которые начинают интенсивно пролиферировать в условиях подавления чувствительных форм [5,6]. Особенно большое количество гнойных послеоперационных осложнений наблюдается в абдоминальной хирургии. Так, нагноение ран при аппендэктомии развивается у 13% пациентов [4,7]. В настоящее время в этиологической структуре гнойных хирургических инфекций на первое место выдвинулась проблема условно-патогенных микроорганизмов [7]. Один из путей профилактики послеоперационных инфекционных раневых осложнений – периоперационная антибиотикопрофилактика (АБП) [3,6,8]. До настоящего времени системное применение антибиотиков с целью профилактики остается предметом дискуссий.

Цель исследования - сравнить эффективность применения ампициллина/сульбактама, цефазолина, цефтриаксона в качестве препарата антибиотикопрофилактики по снижению числа послеоперационных инфекционных раневых осложнений при остром аппендиците.

Материалы и методы исследований. Работа выполнена в отделениях хирургической реанимации 2-й клиники Ташкентской Медицинской Академии с октября 2013 по март 2015 гг. В работе выделено две группы больных- основную группу составили 169 пациентов с диагнозом «острый аппендицит» и оперированных в 2013–2015 гг. Эти пациенты получали антибиотикопрофилактику цефазолином, цефтриаксоном, ампициллин/сульбактамом. Контрольную группу составили 169 больных острым аппендицитом, находившихся на лечении в 2010–2012 гг. Данная группа больных не получала периоперационную антибиотикопрофилактику, а получала антибиотикотерапию в послеоперационном периоде. Распределение больных по возрасту, полу и по клинико-морфологическим формам острого аппендицита представлено в таб.1 и 2.

Динамика степени интоксикации оценивалась по показателям:



  1. Лейкоцитарный индекс интоксикации, по формуле Химич С.Ф. (формула 1):

0.1*количество лейкоцитов (тыс. в мкл) * нейтрофилы (%)
ЛИИ (ед.) = ----------------------------------------------------------------------------------- (1)
100-нейтрофилы (%).

  1. Индекс соотношения моноцитов и лимфоцитов (формула 2):

Моноциты (%)

ИСМЛ (ед.) = ------------------------------------------------ (2) Лимфоциты (%)

Таблица 1.

Распределение больных по возрасту и полу в процентах

Группы

Основная группа

Контрольная группа

Ампициллин

/сульбактам



Цефтриаксон

Цефазолин

Без АБП

Возраст, лет

Муж.

Жен.

Муж.

Жен.

Муж.

Жен.

Муж.

Жен.

До 45

80,8

83,3

77,3

67,6

85,4

76,4

80,1

72,4

45 – 59

11,6

8,3

15,7

24,1

8,3

11,8

13,3

15,4

60 – 74

3,8

4,2

5,0

7,1

4,2

9,8

6,1

10,4

75 – 90

3,8

4,2

2,0

1,2

2,1

2,0

0,3

1,2

Старше 90

-

-

-

-

-

-

0,2

0,6

Итого

100,0

100,0

100,0

100,0

100,0

100,0

100,0

100,0

Средний возраст больных, лет (M±σ)

32,3

±

15,9



31,8

±

16,4



32,7

±

15,2



37,0

±

15,4



28,3

±

15,6



32,9

±

15,2



37,5

±

17,7



38,8

±

14,7



Кол-во больных

26

24

38

32

28

21

96

73


1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   27